Nährkartonscheiben – Sortenüberblick
Die Nährkartonscheiben werden als komplettes Set in 2 verschiedenen Packungsgrößen mit 50 oder 100 Stück angeboten. Die Verpackungseinheiten bestehen aus sterilen Nährkartonscheiben in sterilen Petrischalen und sterilen, einzeln verpackten Membranfiltern im Durchmesser 50 mm.
Ihre Wünsche hinsichtlich der Membranfiltersorte (Farbe und Porengröße) oder dem alternativen Durchmesser von 47 mm können wir berücksichtigen. Ebenso sind Membranfilter für die gängigen Membranspendersysteme verfügbar. Bitte sprechen Sie uns an.
NKS für die Bestimmung der Anzahl heterotropher, mesophiler Bakterien
Die Anzahl der heterotroph, mesophil wachsenden Bakterien gibt einen Hinweis für den allgemeinen Hygienestatus von Proben. Für deren Bestimmung werden, in Abhängigkeit verschiedener Vorschriften, Normen oder interner Standards, unterschiedliche Nährmedien empfohlen oder vorgegeben.
| NKS-Typ Nr. 50 / 100 Stk. | Verwendung | Empfohlener Membranfilter | Inkubations- empfehlung | Wachstum | Datenblätter (DB) als Download (pdf) |
|---|---|---|---|---|---|
| Caso-NKS 1030 / 1030-H | Zur Bestimmung der Koloniezahl aus Wasser, Lebensmitteln, kosmetischen und anderen Untersuchungsmaterialien. | Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 1 - 3 Tage bei 37 °C | Beige, bei Pigmentbildung auch farbig. | Technisches-DB |
| Hefeextrakt-NKS 1081 / 1081-H | Zur Bestimmung der Koloniezahl aus Wasser und Abwasser. | Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 2 - 3 Tage bei 30 °C | Beige, bei Pigmentbildung auch farbig. | Technisches-DB |
| mTGE-NKS 1113 / 1113-H | Zur Bestimmung der Koloniezahl aus Wasser, Lebensmitteln und anderem Untersuchungsmaterial. | Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 1 - 3 Tage bei 37 °C | Beige, bei Pigmentbildung auch farbig. | Technisches-DB |
| Plate Count-NKS 1140 / 1140-H | Zur Bestimmung der Koloniezahl aus Wasser, Milch und anderen Lebensmitteln. | Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 2 - 3 Tage bei 30 °C | Beige, bei Pigmentbildung auch farbig. | Technisches-DB |
| R2A-NKS 1155 / 1155-H | Zur Bestimmung der Koloniezahl aus Wasser und anderem Untersuchungsmaterial. Das nährstoffarme Medium bietet anspruchslosen und gestressten Wasserbakterien bei niedrigen Temperaturen und längerer Inkubationszeit optimale Wachstumsbedingungen. | Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 3 - 5 Tage bei 20 °C oder 1 - 3 Tage bei 35 °C | Beige, bei Pigmentbildung auch farbig. | Technisches-DB |
| Standard-NKS 1190 / 1190-H | Zur Bestimmung der Koloniezahl aus Wasser, Abwasser und Getränken. | Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 2 - 3 Tage bei 20 °C oder 1 - 2 Tage bei 30 °C | Beige, bei Pigmentbildung auch farbig. | Technisches-DB |
| Standard-I NKS 1191 / 1191-H | Zur Bestimmung der Koloniezahl aus Wasser, Abwasser und Getränken. | Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 2 - 3 Tage bei 20 °C oder 1 - 2 Tage bei 30 °C | Beige, bei Pigmentbildung auch farbig. | Technisches-DB |
| Standard TTC-NKS 1200 / 1200-H | Zur Bestimmung der Koloniezahl aus Wasser, Abwasser und Getränken. | Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 2 - 3 Tage bei 20 °C oder 1 - 2 Tage bei 30 °C | Durch den Zusatz von 2,3,5-Triphenyltetrazoliumchlorid (TTC) erscheinen alle Kolonien auf Grund der Bildung von Formazan aus TTC rötlich. Die optische Auswertung wird dadurch wesentlich erleichtert. | Technisches-DB |
NKS für den Nachweis und die Bestimmung von E. coli und coliformen Keimen
Das Vorhandensein coliformer Keime und insbesondere von E. coli ist ein Indikator für fäkale Verunreinigungen. Während die meisten dieser Darmbakterien eher als harmlos einzustufen sind, können einige Vertreter dieser Gruppe ernste gesundheitliche Probleme verursachen. Die Überprüfung von Lebensmitteln, Trinkwasser und Getränken auf Abwesenheit dieser Mikroorganismen vor Freigabe für den Handel ist daher über Verordnungen (z.B. TrinkwV) geregelt.
| NKS-Typ Nr. 50 / 100 Stk. | Verwendung | Empfohlener Membranfilter | Inkubations- empfehlung | Wachstum | Datenblätter (DB) als Download (pdf) |
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| Colichrom-NKS 1035 / 1035-H | Zum selektiven und quantitativen Schnellnachweis und Differenzierung von E. coli, coliformen und nicht-coliformen Keimen aus Wasser, Abwasser und Getränken. | Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 21 - 24 Stunden bei 36 ± 2 °C | Auf Grund von chromogenen Verbindungen wachsen Kolonien von E. coli blau, die anderer coliformen Bakterien rötlich und die nicht-coliformer Mikroorganismen beige. Gram-positive Begleitflora wird durch Gallensalze gehemmt. | Technisches-DB |
| Endo-NKS 1090 / 1090-H | Zum Nachweis von coliformen Keimen aus Wasser, Abwasser und anderen Untersuchungsmaterialien. | Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 20 ± 4 Stunden bei 37 ± 1 °C | Kolonien coliformer Keime zeigen eine rote Farbe, bedingt durch das vorhandene Fuchsin. E. coli Stämme entwickeln eine intensivere Färbung, woraus sich bei einigen Stämmen ein metallischer Glanz bilden kann. Durch eine erhöhte Inkubationstemperatur wird die Entwicklung von E. coli gefördert und das Wachstum von Begleitflora gleichzeitig inhibiert. Gram-positive Begleitflora wird zusätzlich durch Gallensalze gehemmt. | Technisches-DB |
| mFC-NKS 1100 / 1100-H | Zum Nachweis von fäkalen, coliformen Keimen aus Abwasser und anderen Untersuchungsmaterialien. | Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 16 - 24 Stunden bei 44 °C | Die erhöhte Inkubationstemperatur von 44 °C fördert das Wachstum von E. coli und inhibiert gleichzeitig die Entwicklung der Begleitflora. E. coli bildet in der Regel bereits nach 16 Stunden blaue Kolonien. Gram-positive Begleitflora wird durch Gallensalze gehemmt. | Technisches-DB |
| Tergitol TTC-NKS 1220 / 1220-H | Zum Nachweis von coliformen Keimen aus Wasser, Abwasser und anderen Untersuchungsmaterialien. | Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 18 - 24 Stunden 37 ± 1 °C | Durch die Vergärung von Laktose, wozu alle coliformen Keimen in der Lage sind, entsteht Säure, die den pH-Indikator nach gelb umschlagen lässt. E. coli bildet nach 12 - 16 Stunden kleine gelbliche, später größere gelborange Kolonien mit gelbem Hof. Laktose-negative Begleitkeime bilden rote Kolonien, zum Teil mit bläulichem Hof. Die Farbausprägung ist abhängig vom jeweiligen Stamm. Gram-positive Begleitflora wird durch Gallensalze gehemmt. | Technisches-DB |
NKS für den Nachweis von Enterokokken
Enterokokken, die früher den Streptokokken zugeordnet waren, spielen eine wichtige Rolle im Verdauungstrakt von Menschen und Tieren und werden auch bei der Herstellung von Lebensmitteln eingesetzt. Bei immungeschwächten Menschen können jedoch einige Vertreter dieser Bakterien ernste Erkrankungen auslösen. Die Untersuchung von Trink-, Mineral- und Tafelwasser ist daher vorgeschrieben.
| NKS-Typ Nr. 50 / 100 Stk. | Verwendung | Empfohlener Membranfilter | Inkubations- empfehlung | Wachstum | Datenblätter (DB) als Download (pdf) |
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| Azid-NKS 1010 / 1010-H | Zum Nachweis von Enterokokken aus Wasser und anderem Untersuchungsmaterial. | Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 44 ± 4 Stunden bei 37 ± 1 °C | Enterokokken bilden kleine dunkelrote Kolonien. Das Wachstum der Begleitflora wird durch Azid gehemmt. | Technisches-DB |
NKS für den Nachweis und die Bestimmung von Pseudomonaden
Pseudomonaden sind ubiquitär. Sie sind im Wasser, im Boden und auf und in Pflanzen und Tieren zu finden. Einige Vertreter dieser aeroben, gram-negativen Stäbchen können für den Menschen gefährlich werden. Die Untersuchung von Trink-, Mineral-, Tafel- und Badewasser auf Pseudomonaden ist daher gesetzlich vorgeschrieben.
| NKS-Typ Nr. 50 / 100 Stk. | Verwendung | Empfohlener Membranfilter | Inkubations- empfehlung | Wachstum | Datenblätter (DB) als Download (pdf) |
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| Cetrimid-NKS 1040 / 1040-H | Zum Nachweis von Ps. aeruginosa aus Wasser und kosmetischen Produkten sowie anderem Untersuchungsmaterial. | Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 44 ± 4 Stunden bei 37 ± 1 °C | Ps. aeruginosa bildet blaugrüne Kolonien mit blauem Hof. Begleitflora wird durch Cetrimid im Wachstum gehemmt. | Technisches-DB |
| Pseudomonas CN-NKS 1145 / 1145-H | Zum Nachweis von Ps. aeruginosa aus Wasser, Abwasser und anderen Untersuchungsmaterialien. | Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 44 ± 4 Stunden bei 37 ± 1 °C | Ps. aeruginosa bildet blaugrüne Kolonien mit blaugrünem Hof. Die Intensität der Farbbildung kann abhängig vom Stamm unterschiedlich ausfallen. Begleitflora wird durch Cetrimid und Nalidixinsäure im Wachstum gehemmt. | Technisches-DB |
NKS für den Nachweis von Milchsäurebakterien
Milchsäurebakterien sind eine heterogene Gruppe von anaeroben, meist aber aerotoleranten Bakterien, die alle in der Lage sind, Glukose zu Milchsäure zu vergären. Obwohl Milchsäurebakterien eine wichtige Rolle in der Herstellung von Lebensmitteln spielen, sind die Stoffwechselprodukte einiger Vertreter in Produkten der Getränkeindustrie unerwünscht, da sie zu Fehlaromen und Verderbnis führen. Die routinemäßige Untersuchung auf Milchsäurebakterien in den Fertigungsprozessen spielt daher eine wichtige Rolle.
| NKS-Typ Nr. 50 / 100 Stk. | Verwendung | Empfohlener Membranfilter | Inkubations- empfehlung | Wachstum | Datenblätter (DB) als Download (pdf) |
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| Bier-NKS 1020 / 1020-H | Zum Nachweis von bierschädlichen Keimen u.a. der Gattung Lactobacillus, Pediococcus und Zymomonas. | Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 2 - 4 Tage bei 30 °C unter anaeroben Bedingungen (mikroaerophil) | Das Wachstum von Hefen und Schimmelpilzen wird durch Actidion (Bestandteil der Rezeptur) unterdrückt. | Technisches-DB |
| MRS-NKS 1110 / 1110-H | Zum Nachweis von Milchsäurebakterien aus Süßgetränken, Lebensmitteln und anderem Untersuchungsmaterial. | Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 2 - 4 Tage bei 28 °C unter anaeroben Bedingungen (mikroaerophil) | Das Wachstum von Hefen und Schimmelpilzen wird durch Actidion (Bestandteil der Rezeptur) unterdrückt. | Technisches-DB |
| Wein-NKS 1230 / 1230-H | Zum selektiven Nachweis von weinschädlichen Keimen, u.a. der Gattung Leuconostoc, Lactobacillus und Pediococcus. Unter anaeroben Bedingungen ist auch Acetobacter nachweisbar. | Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 2 - 5 Tage bei 30 °C unter anaeroben Bedingungen (mikroaerophil) | Das Wachstum von Hefen und Schimmelpilzen wird durch Actidion (Bestandteil der Rezeptur) unterdrückt. | Technisches-DB |
NKS zum Nachweis von Hefen und Schimmelpilzen
Ebenso wie manche Bakterien, spielen Hefen und Schimmelpilze bei der Herstellung von Lebensmitteln z. B. von Bier, Wein, Käse und Backwaren eine wichtige Rolle. Einige Vertreter sind in bestimmten Herstellungsprozessen jedoch unerwünscht, da sie zu Fehlaromen führen, die Haltbarkeit der Lebensmittel beeinträchtigen oder auch ernste gesundheitliche Probleme der Konsumenten verursachen können. Die Überwachung der Produktionsprozesse hinsichtlich dieser Mikroorganismen ist daher notwendig.
| NKS-Typ Nr. 50 / 100 Stk. | Verwendung | Empfohlener Membranfilter | Inkubations- empfehlung | Wachstum | Datenblätter (DB) als Download (pdf) |
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| Brettanomyces-NKS 1025 / 1025-H | Zum Nachweis von Brettanomyces Hefen aus Wein, Bier und fruchtsafthaltigen Getränken. | Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 4 - 7 Tage bei 25 °C | Brettanomyces Hefen bilden gelbe bis orangegelbe Kolonien mit gelbem Hof und sind daher leicht von den meist weißlichen bis cremefarben Kolonien der anderen Hefen zu unterscheiden, die zudem weitgehend durch Actidion gehemmt werden. | Technisches-DB |
| Lysin-NKS 1095 / 1095-H | Zum selektiven Nachweis von "Wildhefen" in Brauereien. | Schwarz mit Gitter, Porengröße 0,8 µm | 2 - 5 Tage bei 25 °C | Nur wilde Hefen können Lysin als Stickstoff-Quelle verwerten. Sie bilden meist weiße bis cremefarbene, gelegentlich auch rötliche Kolonien. Kulturhefen und Fremdhefen der Gattung Saccharomyces zeigen kein Wachstum. | Technisches-DB |
| Malzextrakt-NKS 1099 / 1099-H | Zum selektiven Nachweis von Hefen und Schimmelpilzen aus Getränken, Lebensmitteln und anderem Untersuchungsmaterial. | Schwarz mit Gitter, Porengröße 0,6 µm | 2 - 5 Tage bei 25 - 30 °C | Hefen bilden weißliche bis cremefarbene, gelegentlich auch rötliche Kolonien. Die Kolonien von Schimmelpilzen sind anfangs weiß mit deutlichem Luftmycel (samtartig) und färben sich bei Konidienbildung gelblich, grünlich oder bräunlich bis schwarz. Der niedrige pH-Wert des Mediums hemmt das Wachstum der meisten Bakterien. Säuretolerante Keime können jedoch als Begleitkeime gelegentlich auftreten. | Technisches-DB |
| OGY-NKS 1115 / 1115-H | Zum selektiven Nachweis von Hefen und Schimmelpilzen aus Lebensmitteln, Fruchtsaft und anderen Untersuchungsmaterialien. | Schwarz mit Gitter, Porengröße 0,6 µm | 2 - 5 Tage bei 25 - 30 °C | Hefen bilden weißliche bis cremefarbene, gelegentlich auch rötliche Kolonien. Die Kolonien von Schimmelpilzen sind anfangs weiß mit deutlichem Luftmycel (samtartig) und färben sich bei Konidienbildung gelblich, grünlich oder bräunlich bis schwarz. Der niedrige pH-Wert des Mediums und das vorhandene Oxytetracyclin hemmen weitgehend das Wachstum der bakteriellen Begleitflora. | Technisches-DB |
| Osmophile-NKS 1130 / 1130-H | Zum Nachweis von osmophilen und osmotoleranten Hefen und Schimmelpilzen aus Zucker, Süßwaren und zuckerhaltigen Lebensmitteln. | Schwarz mit Gitter, Porengröße 0,8 µm | 5 - 7 Tage bei 25 - 30 °C | Hefen bilden weißliche bis cremefarbene Kolonien. Die Kolonien von Schimmelpilzen sind anfangs weiß mit deutlichem Luftmycel (samtartig) und färben sich bei Konidienbildung gelblich, grünlich oder bräunlich bis schwarz. Der hohe Zuckergehalt hemmt das Wachstum der Begleitflora. | Technisches-DB |
| PRY-NKS 1143 / 1143-H | Zum Nachweis und der Bestimmung der Koloniezahl von Konservierungsmittel-resistenten Hefen z.B. Zygosaccharomyces | Schwarz mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 3 – 5 Tage bei 25 °C | Weiß bis Beige | Technisches-DB |
| Sabouraud-NKS 1160 / 1160-H | Zum Nachweis von Hefen und Schimmelpilzen aus kosmetischen Produkten, Verpackungsmaterial, sowie zur Isolierung von Dermatophyten und zur Reinkultur. | Schwarz mit Gitter, Porengröße 0,8 µm | 2 - 5 Tage bei 25 - 30 °C | Hefen bilden weißliche bis cremefarbene, gelegentlich auch rötliche Kolonien. Die Kolonien von Schimmelpilzen sind anfangs weiß mit deutlichem Luftmycel (samtartig) und färben sich bei Konidienbildung gelblich, grünlich oder bräunlich bis schwarz. Der niedrige pH-Wert des Mediums hemmt das Wachstum der meisten Bakterien und fördert die Entwicklung von Hefen und Schimmelpilzen. | Technisches-DB |
| Schaufus Pottinger-NKS 1180 / 1180-H | Zum Nachweis von Hefen und Schimmelpilzen aus Zucker und zuckerhaltigen Getränken. | Schwarz mit Gitter, Porengröße 0,8 µm | 2 - 3 Tage bei 25 - 30 °C | Durch Säureproduktion der zuckervergärenden Hefen und Schimmelpilze schlägt der pH-Indikator von blaugrün nach gelb um und führt zu gelblichen Kolonien, zum Teil mit gelbem Hof. Nicht-Säurebildner wachsen dagegen blaugrün. Der niedrige pH-Wert des Mediums hemmt das Wachstum der meisten Bakterien und fördert die Entwicklung von Hefen und Schimmelpilzen. | Technisches-DB |
| Würze-NKS 1260 / 1260-H | Zum Nachweis von Hefen und Schimmelpilzen aus Getränken, Lebensmitteln und anderem Untersuchungsmaterial. | Schwarz mit Gitter, Porengröße 0,6 µm | 2 - 3 Tage bei 25 °C | Hefen bilden weißliche bis cremefarbene, gelegentlich auch rötliche Kolonien. Die Kolonien von Schimmelpilzen sind anfangs weiß mit deutlichem Luftmycel (samtartig) und färben sich bei Konidienbildung gelblich, grünlich oder bräunlich bis schwarz. Der niedrige pH-Wert des Mediums hemmt das Wachstum der meisten Bakterien und fördert die Entwicklung von Hefen und Schimmelpilzen. | Technisches-DB |
NKS zum Nachweis besonderer Mikroorganismen oder Gruppen von Mikroorganismen
| NKS-Typ Nr. 50 / 100 Stk. | Verwendung | Empfohlener Membranfilter | Inkubations- empfehlung | Wachstum | Datenblätter (DB) als Download (pdf) |
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| BAT-NKS 1015 / 1015-H | Zum selektiven Nachweis von Alicyclobacillus sp. aus zuckerhaltigen Getränken. | Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 2 - 5 Tage bei 43 - 45 °C | Alicyclobacillus sp. bilden cremefarbene Kolonien. Das Wachstum von Begleitflora wird durch den niedrigen pH-Wert und die hohe Inkubationstemperatur gehemmt. | Technisches-DB |
| Chapman-NKS 1050 / 1050-H | Zum selektiven Nachweis von pathogenen Staphylokokken aus Lebensmitteln und kosmetischen Untersuchungsmaterialien. | Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 24 - 48 Stunden bei 37 °C | Staphylococcus aureus bildet gelbe Kolonien mit gelbem Hof. Die hohe Konzentration an Natriumchlorid hemmt das Wachstum der Begleitflora. | Technisches-DB |
| Dextrose Trypton-NKS 1070 / 1070-H | Zur Bestimmung der Koloniezahl mesophiler Mikroorganismen und zum Nachweis thermophiler Sporenbildner aus Zucker und Lebensmitteln. | Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 2 - 3 Tage bei 30 °C (mesophil) oder 1 - 2 Tage bei 55 °C (thermophil) | "Flat-sour" Kolonien (Bacillus coagulans) sind grünlich-gelb mit gelbem Hof. | Technisches-DB |
| Orangenserum-NKS, pH 5,5 1120 / 1120-H | Zum Nachweis von acidophilen und acidotoleranten Keimen aus Getränken und Lebensmitteln. | Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 2 - 3 Tage bei 30 °C | Durch die Zusammensetzung und den niedrigen pH-Wert können sich sowohl Hefen und Schimmelpilze, als auch säuretolerante Bakterien entwickeln. Bei anaerober Inkubation kommen auch anspruchsvolle Laktobazillen zur Entwicklung. | Technisches-DB |
| Orangenserum-NKS, pH 3,1 1121 / 1121-H | Zum Nachweis von acidophilen und acidotoleranten Keimen aus Getränken und Lebensmitteln. | Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 2 - 3 Tage bei 30 °C | Durch die Zusammensetzung und den niedrigen pH-Wert können sich sowohl Hefen und Schimmelpilze, als auch säuretolerante Bakterien entwickeln. Bei anaerober Inkubation kommen auch anspruchsvolle Laktobazillen zur Entwicklung. | Technisches-DB |
| Weman-NKS 1240 / 1240-H | Nachweis schleimbildender Bakterien aus Zucker, zuckerhaltigen Getränken und Lebensmitteln. | Grün mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 2 - 3 Tage bei 30 °C | Schleimbildner (z.B. Leuconostoc sp.) bilden farblose, wassertropfenartige Kolonien. | Technisches-DB |
| Wismut Sulfit-NKS 1250 / 1250-H | Zum selektiven Nachweis von Salmonellen aus Wasser, Lebensmitteln und anderem Untersuchungsmaterial. | Weiß mit Gitter, Porengröße 0,45 µm | 24 - 48 Stunden bei 37 °C | Salmonellen bilden dunkelbraune bis schwarze Kolonien, meist mit hellem Rand und schwarzem Hof ("Fischauge"). | Technisches-DB |